Lineas de investigación
Lineas de investigación
Los investigadores y becarios que forman parte de GEMPA se focalizan en diversas áreas in investigación
Taxonomía
La taxonomía es la rama de la biología que se dedica a identificar, nombrar y ordenar a los seres vivos en diferentes grupos según sus características y vínculos evolutivos.
No puede haber dos animales con el mismo nombre ni dos nombres para el mismo animal.
GEMPA se encuentra compuesta principalmente por taxónomos. Trabajan para usar el nombre correcto cuando existe; muchas veces teniendo que proponer uno nuevo, sobre todo con muestras tan poco exploradas como aquellas del Mar Profundo. Bien realizado, el nombre es universal y eterno…
La taxonomía sienta las bases para cualquier potencial estudio que quiera hacerse a un organismo. ¿Dónde viven? ¿qué comen? ¿son endémicos? ¿de dónde vienen? ¿quiénes se los comen? ¿son invasores? ¿cómo se reproducen? ¿se usan en farmacología? ¿están en peligro? ¿son peligrosos? ¿son comerciales? Todas estas preguntas no pueden ser respondidas eficientemente sin tener claro qué especie se está estudiando.

. CREDIT: ROV SuBastian / Schmidt Ocean Institute

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Documented in the Mar del Plata Submarine Canyon off Argentina’s coast. The Mar del Plata submarine canyon, one of Argentina’s…

. CREDIT: ROV SuBastian / Schmidt Ocean Institute

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Ambiente y funcionamiento del ecosistema
Esta rama involucra diversos tipos de estudios
Análisis de microplásticos: son partículas de plástico menores de 5 milímetros que se originan por la degradación de plásticos grandes.
Tramas alimentarias: estudio del flujo de energía y nutrientes entre productores, consumidores y descomponedores de un ecosistema
Carbono azul: el dióxido de carbono almacenado en los océanos
Sedimentología: los procesos de formación, transporte y deposición de sedimentos
Durante la Campaña Talud Continental IV, para llevar a cabo estos estudios se tomaron muestras de sedimentos mediante push-corers. Los push-corers son tubos huecos que se insertan verticalmente en el sedimento para extraer una porción o «testigo» del mismo, conservando su estratificación. También, en el caso de los primeros tres, se tomaron muestras de agua con botellas Niskin a diferentes profundidades. Tanto los push-corers como las botellas Niskin se encontraban equipados al SuBastian desde donde eran controlados para la recolección de las muestras en sitios específicos.
Las muestras de agua se recolectaron a diferentes profundidades y estaciones utilizando una botella Niskin. Tras la recuperación, el agua se transfirió a botellas limpias y se congeló a -20 °C hasta su análisis. Las muestras de sedimento se recolectaron mediante un tubo de empuje (push-core). A bordo, solo se utilizó la profundidad de 0–5 cm para el análisis. Las muestras se colocaron en bolsas plásticas y se congelaron a -20 °C hasta su análisis. Los especímenes de las especies más abundantes fueron identificados y colocados individualmente en bolsas plásticas, para luego ser congelados a -20 °C como preservación antes del análisis.
Las muestras de agua congeladas serán filtradas, y los filtros se colocarán en una placa Petri limpia. El sedimento será secado, tamizado, separado por densidad y luego filtrado. Los especímenes de biota serán disecados, y el tejido blando será sometido a digestión alcalina. La solución resultante será filtrada. Se realizará un examen microscópico de cada filtro para cuantificar y medir los microplásticos. Se empleará espectroscopía Raman para determinar la composición química de cada microplástico identificado. Se realizarán controles de contaminación a lo largo de todos los procedimientos para garantizar la precisión de los resultados.
Además, las muestras de push-corers se utilizarán para determinar el contenido de materia orgánica y los stocks de carbono, incluyendo las fracciones de carbono orgánico e inorgánico. Además, se analizarán los isótopos estables de carbono y nitrógeno (δ¹³C y δ¹⁵N) para identificar las fuentes de materia orgánica. Finalmente, se realizará datación por radionúclidos (²¹⁰Pb y ²¹⁴Pb) para estimar las tasas de enterramiento de carbono orgánico.

Diego Urteaga, assistant researcher at CONICET, extracts a sample of sediment from a push core extracted by ROV SuBastian. .…

(L-R) Emiliano Ocampo (Associate Researcher, CONICET) and Graziella Bozzano (Senior Marine Geologist, Argentine Navy) and begin to process a sediment…
ADN ambiental
El análisis de ADN ambiental (eDNA, por sus siglas en inglés) permite estudiar la diversidad marina, sin necesidad de capturar los organismos. Consiste en filtrar restos animales que se encuentran suspendidos en el agua, tales como células, heces, mucus, escamas, mudas, fluidos, etc., y utilizar su ADN para identificar las especies presentes en la zona. Esta tecnología constituye un avance innovador en el monitoreo de la biodiversidad de aguas profundas, principalmente al tratarse de ambientes donde recolectar muestras es una tarea muy difícil.
Durante la Campaña Talud Continental IV se utilizaron dos equipos especializados para el muestreo de ADN ambiental, propiedad de Santiago Herrera en la Universidad de Lehigh, y certificados hasta 6.000 m de profundidad, fueron usados por primera vez en el mar a bordo del ROV SuBastian. Cada unidad cuenta con cuatro bombas controlables de manera independiente, equipadas con sensores integrados de temperatura y presión, y operan utilizando un suministro eléctrico de 24 V del ROV. Para esta campaña, las unidades se configuraron con cartuchos de filtro de 90 mm, diseñados para un muestreo de alto caudal y volumen. En conjunto, los sistemas permiten la recolección in situ de ADN ambiental (eDNA) y partículas directamente en profundidad, con cada bomba capaz de filtrar cientos de litros de agua de mar.
Las unidades fueron montadas en la parte frontal de SuBastian, a ambos lados de la cámara científica 4K. Esta disposición preservó un amplio campo de visión para la conciencia situacional, a la vez que posicionó los muestreadores cerca de los hábitats bentónicos.
A lo largo de todas las inmersiones, el sistema recolectó 104 muestras discretas de eDNA, cada una representando en promedio más de 250 litros de agua de mar filtrada directamente en el fondo marino, alcanzando un total de más de 26.000 litros. Esta tecnología constituye un avance innovador en el monitoreo de la biodiversidad de aguas profundas, ya que permite un muestreo sensible al hábitat, normalizado por volumen y con alta resolución espacial. El exitoso primer despliegue de estos sistemas en SuBastian demostró la utilidad de este enfoque para el muestreo ambiental dirigido en tiempo real, sentando las bases para ampliar su uso en futuras campañas.


Reproducción
Los invertebrados bentónicos marinos presentan una notable diversidad de estrategias reproductivas. Estas van desde la liberación de gametas en el agua (fecundación externa) hasta la cópula (fecundación interna). Como consecuencia, se observa una amplia variedad de modos de desarrollo: larvas de vida libre (planctotróficas o lecitotróficas), incubación interna o externa, cápsulas ovígeras que aportan nutrientes adicionales o huevos de gran tamaño.
En los ecosistemas profundos, donde predominan temperaturas bajas (a menudo inferiores a 5 °C) y una limitada disponibilidad de alimento, se ha señalado una tendencia hacia estrategias reproductivas con estadios larvales abreviados y desarrollo directo. Diversos estudios sugieren que estas condiciones favorecen modalidades con mayor protección, como la incubación, que aumentan la probabilidad de supervivencia de los embriones. Sin embargo, este tipo de estrategias suelen implicar una menor capacidad de dispersión por corrientes marinas, un aspecto clave a la hora de evaluar el impacto de actividades extractivas en los fondos profundos.

. CREDIT: ROV SuBastian / Schmidt Ocean Institute

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